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杰论系列 | FLT3抑制剂药效学的生物标志物- PIA方法检测磷酸化FLT3蛋白

返回列表 来源: 发布日期: 2023.11.09

一、FLT3的结构与表达

FLT3(FMS样酪氨酸激酶3,FMS-like tyrosine kinase 3)又叫CD135,在人体中由FLT3基因编码,属于Ⅲ型受体酪氨酸激酶(receptor tyrosine kinase, RTK)家族,该家族还包括PDGFR,FMS和KIT。FLT3由5个功能结构域组成,包括免疫球蛋白样胞外结构域、跨膜结构域、近膜结构域(JMD)、酪氨酸激酶结构域(TKD)和C-末端结构域[1]

FLT3广泛表达于造血干细胞和祖细胞中 ,其配体(FL)通过骨髓基质细胞以膜结合或可溶性形式表达,造血系统中的很多细胞都可以表达FLT3配体(FL)。


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图1. FLT3结构示意图及突变位点[1]
二、FLT3的激活和致病机制

FLT3基因突变在一些急性淋巴细胞白血病( ALL, 1-3% )、骨髓异常增生( MDS, 5-10% )中被发现,是急性髓系白血病( Acute myeloid leukemia AML 患者最常见的基因改变和预 后不良因素 30% 左右的成年 AML 患者会出现 FLT3 基因突变。 这使得 FLT3 成为血液系统恶性肿瘤中最常 的突变基因之一。
FLT3的突变主要包括内部串联重复突变(FLT3-ITD)以及酪氨酸激酶结构域的点突变(FLT3-TKD) ,分别占25%和5%,这两种突变都可以激活FLT3受体信号,从而促进AML细胞的增殖和分化。
FLT3通过与配体(FL)结合而被激活,导致其二聚化和构象变化。 随后FLT3自身磷酸化(phosphorylation,P)并触发信号传导,激活细胞内信号级联,例如PI3K/AKT/mTOR、RAS/RAF/MAPK和JAK/STAT, 诱导细胞的增殖、分化、存活和凋亡,如图2所示 [2]


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图2. FLT3信号通路示意图[2]

FLT3-ITD和FLT3-TKD突变的FLT3分子均能引起FLT3发生自动磷酸化进而导致FLT3发生配体非依赖性的组成性激活 ,进一步激活其下游异常的信号转导,从而起到促进增殖和抑制凋亡的作用,使得具有此突变表型的白血病患者临床预后较差。


三、FLT3抑制剂

FLT3抑制剂主要通过竞争性抑制FLT3受体中的ATP结合位点,导致细胞周期停滞和分化。 FLT3抑制剂分为第1代(如索拉非尼和midostaurin) 第2代FLT3抑制剂(如quizartinib和吉瑞替尼)
  • 第一代FLT3抑制剂为广谱、多激酶抑制剂,对FLT3特异性较低,容易产生脱靶效应和相关毒性反应,而且它们的脱靶效应也增加了不良事件的发生风险。
  • 第二代药物作为选择性靶向FLT3抑制剂,与第一代抑制剂相比,疗效更好,特异性更强[3] 。根据智慧芽数据,全球共有132款靶向FLT3药物,其中终止或无进展的药物有44款,其余多数处于早期研发阶段,可见FLT3赛道的竞争逐步加剧。

此外,研究表明,维持有效的抑制剂血浆浓度对实现临床疗效至关重要 。血药浓度是影响药物药理作用的重要因素。然而,它不能反映FLT3抑制剂的临床疗效,因为大多数抑制剂与血浆蛋白结合,导致实际发挥药理作用的游离化合物减少[4] 。如表1所示,人血浆中FLT3抑制剂的GI50值高于体外IC50,特别是,米哚妥林(midostaurin)、来他替尼(lestaurtinib)的GI50值比IC50高300倍以上。

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表1. 图片来源于参考文献 [4]


四、Plasma inhibitory activity (PIA):磷酸化FLT3蛋白检测

目前FLT3抑制剂的药效学指标-蛋白类的PD Biomarkers主要集中在Phospho-FLT3的 检测,主要有以下2种检测方法:
1)通过直接检测病人的外周血单个核细胞中的Phospho-FLT3的状态。
  • 该方法的优点是可以直接反映病人体内的细胞用药后的状态,然而却受病人外周血单个核细胞数量的限制,一般患病后,患者外周血中PBMC数量减少,样本采集和处理在医院受限等因素,导致样本质量不合格,如得到PBMC数量过少,溶血等,导致得不到较理想的检测结果。

2)通过体外实验PIA方法,作为了一种替代方法,来检测病人给药前和给药后不同时间点的血药对表达突变型FLT3的细胞中Phospho-FLT3的抑制作用,间接评估药效 [5]

  • 优点是使用该方法只需要0.5-1毫升血浆样本即可满足检测需求,采样方便,采集全血少,这对儿科患者尤其重要,而且样本质量不易受影响。并且白血病细胞系中FLT3的抑制作用已被证明与原发性白血病母细胞中的抑制作用相关 [6]

目前,血浆抑制活性(plasma inhibitory activity,PIA)测定取代血药浓度已被确立为评价FLT3抑制剂临床疗效的新指标,并已纳入临床试验的评价标准 [4]

  • 在PIA分析中,将阳性细胞系与来自给药患者的血浆一起培养,然后收集细胞,获得细胞裂解液,通过WB/ELISA/MSD或者其他方法分析评估阳性细胞系的磷酸化状态,一般比较给药前和给药后的磷酸化水平。实验流程如下图所示。

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图3. PIA分析的实验流程
  • 在PIA实验中,筛选合适的细胞系至关重要 细胞系的选择既要贴近临床适应症,又要对抑制剂有反应,一般需要对细胞系进行筛选。针对FLT3抑制剂关于AML研究的课题,我们选择了MV4-11细胞系。随机选取一例健康志愿者血浆样本,参考药代动力学参数,加入不同浓度的FLT3抑制剂,模拟药物进入人体血液,将生长至对数期的细胞饥饿处理后,将含药血浆和不含药血浆与细胞在细胞培养箱中共孵育,收集孵育后的细胞,然后 按照迈杰医学开发的方法进行Phospho-FLT3/Total-FLT3的检测来评价药物的效果。 Phospho-FLT3和Total-FLT3检测结果显示,血浆中药物能够明显抑制MV4-11细胞系中Phospho-FLT3的表达,最高能够达到90%左右,且随着抑制剂浓度的下降,Phospho-FLT3抑制率%也呈现下降趋势。

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图4. 采用GraphPad Prism 9.00软件中的log(inhibitor) vs. response -- Variable slope (four parameters)来进行药物对MV-4-11细胞Phospho-Flt3的抑制曲线图绘制(注:数据来自迈杰医学)
另外,Phospho-FLT3的检测目前文献中大多使用半定量的Western blot方法,我们开发了一种ELISA方法,通过使用细胞系样品自制标准曲线,达到了相对定量的目的:

(1) 取培养的对数扩增期MV4-11细胞,收集,然后进行细胞计数,裂解总蛋白浓度上样量和OD值的关系进行拟合曲线(标准曲线,如图3所示);

2)拟合曲线确认后,将最高浓度点的值定义一个相对值100,其他的点依次按稀释比例递减,制定了标准曲线,可以做到Phospho-FLT3的相对定量

3)同时使用试剂盒检测total-FLT3,对检测结果进行均一化处理,使得抑制率计算更加准确。

我们对该方法进行了全验证,均符合接受标准。

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5 Phospho-FLT3标准曲线
五、总结

PIA方法是一种体外药效学的实验,最早是针对FLT3检测开发的,目前在临床试验中用于评估外体对FLT3激酶的抑制作用,也适用于一些多激酶抑制剂的研究[6]
  • 迈杰医学中心实验室目前已开发了多种采用PIA实验检测磷酸化蛋白的方法,如FGFR1,P70S6K,4EBP1。 PIA方法:首先可以通过采集少量全血分离血浆即可满足检测的需求,这对儿童患者尤其重要,同时避免了医院分离PBMC的繁琐操作、全血需求量大以及医院处理条件的限制导致的PBMC样本质量不合格无法检测等问题;其次血浆样本的稳定性一般比PBMC更好。

  • 此外,迈杰医学中心实验室能够提供药物临床试验过程中生物标志物检测方法的开发和验证, 包含PD细胞因子、可溶性蛋白、磷酸化/乙酰化蛋白、PK,ADA, Nab等,已完成上百项的方法开发和确认,能够提供更优质的服务。

参考文献

[ 1 ] Patnaik MM. The importance of FLT3 mutational analysis in acute myeloid leukemia.  Leuk Lymphoma . 2 018;59(10):2273-2286. doi:10.1080/10 428194.2017.1399312

[2] Chen Y, Pan Y, Guo Y, et al. Tyrosine kinase inhibitors targeting FLT3 in the treatment of acute myeloid leukemia. Stem Cell Investig. 2017;4:48. Published 2017 Jun 2. doi:10.21037/sci.2017.05.04

[3] Short NJ, Kantarjian H, Ravandi F, Daver N. Emerging treatment paradigms with FLT3 inhibitors in acute myeloid leukemia. Ther Adv Hematol. 2019 Feb 15;10:2040620719827310. doi: 10.1177/2040620719827310. PMID: 30800259; PMCID: PMC6378516.

[4] Kiyoi H, Kawashima N, Ishikawa Y. FLT3 mutations in acute myeloid leukemia: Therapeutic paradigm beyond inhibitor development. Cancer Sci. 2020;111(2):312-322. doi:10.1111/cas.14274

[5] Levis M, Brown P, Smith BD, et al. Plasma inhibitory activity (PIA): a pharmacodynamic assay reveals insights into the basis for cytotoxic response to FLT3 inhibitors. Blood. 2006;108(10):3477-3483. doi:10.1182/blood-2006-04-015743

[6] Jennifer E Podesta, Melanie J Griffin, Richard Sugar, Matthew S Squires, Alan Boddy, Spiros Linardopoulos, Andrew DJ Pearson, Andrew S Moore; Adaptation and Validation of the Plasma Inhibitory Activity (PIA) Assay to Detect Inhibition of Aurora, ABL and FLT3 Kinases by AT9283 In Children and Adolescents with Leukaemia. Blood 2010; 116 (21): 1818. doi: https://doi.org/10.1182/blood.V116.21.1818.1818

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