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细胞治疗临床检测解决方案——PK/PD篇

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01  前景介绍


嵌合抗原受体T细胞(CAR-T)疗法属于细胞免疫治疗的治疗范式,能够解决肿瘤微环境带来的疾病特异性挑战。通过使用合成生物学和基因编辑技术,研究人员可以有效地设计CAR-T细胞,使其更安全、更有效。此外,CAR-T细胞可作为活T细胞“微药物”,向TME靶向递送免疫调节分子。

图1. CAR-T细胞的生命周期和安全有效治疗的相关挑战[1]

但是免疫细胞治疗产品的细胞来源、类型、体外操作等方面异质性较大,其治疗原理和体内作用等相较传统药物更加复杂。为了获得预期治疗效果,免疫细胞治疗产品可能需要通过特定的操作措施、给药方法或联合治疗策略来进行给药。
迈杰医学 为精准医疗提供生物标志物的发现和验证、新药临床试验病人的分子检测和入组筛选、检测方法开发及伴随诊断试剂盒商业化等一体化解决方案,解决创新药物研发痛点及用药痛点。凭借核酸、蛋白、细胞等转化医学全平台可为CGT药物临床实验提供生物标志物检测,如药代动力学、药效学、免疫原性、外源基因整合位点等检测。



02  检测指导原则

CAR-T细胞的临床药理学评估包括药代动力学(PK)、药效学(PD)和免疫原性研究,前两者的研究为确定药品的安全性和有效性提供了重要信息。

图2. 免疫细胞治疗产品临床试验技术指导原则(试行)(2021.02)
图3. Considerations for the Development of Chimeric Antigen Receptor(CAR) T Cell Products

FDA行业指导草案(2022.03)


  • PK

CAR-T细胞是能够在给药后增殖的活的药物。因此,传统的吸收、分布、代谢和清除(ADME)标准不能用于模拟CAR-T细胞的药代动力学。给药后,CAR-T细胞在人体内扩增并持续存在。应按照规定的时间表收集样本,如血液和骨髓样本,以监测CAR-T细胞的体内持久性和增殖。对于全身暴露,申请人应收集足够采样时间点的血样,以得出CAR-T细胞浓度-时间曲线。
FDA推荐以下与CAR-T细胞扩增和持久性相关的PK测量:Cmax(峰浓度)、Tmax(达峰时间)、pAUC(曲线下局部面积);Clast(最后观察到的浓度);Clast时间;和t1/2(终末半衰期)。部分暴露(pAUC)可用于暴露与疗效和/或安全性之间的相关性分析。为了评估可能影响CAR-T细胞体内扩增和持久性的因素,应同时考虑患者相关因素和产品相关因素,产品相关因素包括但不限于CAR-T细胞组成和分化状态。
为描述CAR-T细胞在体内的动力学特征,FDA建议PK取样计划包括足够多的时间点,尤其是在扩增阶段,通常在输注后两周左右。可以通过测量转基因和CAR表达水平来监测CAR-T细胞的持久性。为了探索CAR-T细胞暴露与反应之间的关系,FDA建议尽可能对CAR-T细胞进行功能分析(免疫表型)和克隆性分析 [2]


  • PD

在与抗原表达细胞特异性结合后,CAR-T细胞启动信号级联,以促进T细胞活化、增殖、获得效应功能以及产生细胞因子和趋化因子。这些事件导致靶细胞被清除。CAR-T细胞药效学评估包括监测细胞因子、趋化因子、效应物、血液免疫表型和临床终点(如杀伤肿瘤细胞)水平的变化。FDA建议根据CAR-T细胞的作用机制、靶向疾病特异性和临床结果选择药效学生物标记物。PD取样方案应反映PD生物标记物特征和预期的反应持续时间。

为了提高CAR-T细胞的安全性和有效性,FDA建议评估以下探索性相关分析:(1)CAR-T细胞产品特征与CAR-T细胞药代动力学特征之间的关系;(2)使用临床PK和PD数据研究CAR-T细胞暴露与反应之间的关系 [2]

此外,FDA文件还指出CAR-T细胞不仅有显著的治疗潜力,作为活性药物的它还具有独特的毒性特征。随着CAR-T细胞治疗血液学和肿瘤学中得到更广泛的应用,且正在逐渐扩展到其他疾病,研究时更需要充分考虑与CAR-T细胞治疗相关的副作用管理策略。细胞因子释放综合征(CRS)、免疫效应细胞相关神经毒性综合征(ICANS)和细胞减少构成了CAR-T细胞治疗的挑战 [ 3] 。CAR-T细胞有相当大的毒性,尤其是CRS,在某些情况下可能会危及生命 [4-5]

图4. CAR-T细胞介导的细胞因子释放综合征(CRS)的潜在病理生理机制[ 3]

CRS,作为一种生理上的炎症状态是由CAR-T细胞释放的炎症细胞因子和趋化因子触发的 [6-7] 。如图4,炎症细胞因子,包括肿瘤坏死因子(TNF)-α、干扰素(IFN)-γ、白细胞介素(IL)-2、IL-8、IL-10和粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF),由CAR-T细胞与相应靶细胞接触后被激活产生,或者由直接靶细胞裂解产生(A)。这种初始炎症反应招募并激活旁观者免疫细胞,例如单核细胞、巨噬细胞和树突状细胞(DC)和其他T细胞(B),它们通过释放IL-1和IL-6以及一氧化氮(NO)来增强免疫反应(C)。过度炎症会激活内皮细胞,进而释放IL-6,从而形成正CRS反馈回路,以及血管内皮通透性因子(如血管性血友病因子(vWF)和血管生成素(Ang)-2)(D)。这会破坏CRS患者的血管完整性,并介导血流动力学不稳定、毛细血管渗漏和消耗性凝血病 [ 3]



03  检测方法推荐

CAR-T治疗目前正在癌症免疫治疗领域发生革命性的变化,临床试验中要监测CAR-T细胞,以评估患者的细胞扩张和持久性,这两点也是定义CAR-T细胞在体内抗肿瘤疗效的关键机制[8-9]。CAR-T细胞的质量控制分析必须进行验证,并需要在体外检测CAR-T细胞的转导效率和每个细胞的载体拷贝数。

随着使用范围的扩大,CAR-T细胞产品在临床上迫切需要一种可靠、经济有效的检测方法。流式细胞术(FACS)不仅可以评估CAR-T细胞的存活情况,也可以对这些细胞的免疫表型特征进行多参数分析,还可以评估细胞表面CAR分子的蛋白表达。
定量聚合酶链反应(qPCR)可以在基因组水平上检测CAR载体,分析CAR的表达。使用qPCR技术可以轻松得到基因组水平上关于扩增和动力学的信息,也可以检测外周血中极少量的CAR-T细胞。此外,有监管部门要求qPCR通过量化所谓的载体拷贝数(VCN)(每个基因组的平均载体拷贝数)来评估制造的CAR-T细胞的安全性[10-11]。尽管qPCR在临床环境中得到广泛应用,但应注意以下缺点。由于CAR表达取决于多种因素,如DNA甲基化、选择的启动子和启动子特异性,qPCR常常高估了功能性CAR-T细胞的数量 [12]
FACS和qPCR这两种技术的结合可能被建议用于区分CAR-T细胞持续性不足和抗原结合后的CAR下调。在一项对CD19 CAR-T细胞灵敏度和特异性的检测研究中,采用FACS检测分析外周血样本中CAR的表达,并同时采用qPCR检测基因水平的表达。发现二者结果有良好的相关性,但是qPCR的CAR表达频率略高 [13]。另有一项用FACS和qPCR法检测BCMA-CAR-T细胞的对比实验,认为这两种方法对于监测外周血中的BCMA-CAR-T细胞都是有效的。然而,对于浓度非常小的CAR-T细胞,qPCR方法更可靠 [14]。值得一提的是,两项研究都认为FACS和qPCR可以用来监测外周血中的CAR-T细胞,也都建议使用低背景染色的CAR检测试剂。


经验展示

细胞中心

  • CAR-T产品给药后,需监测外周血,骨髓或脑脊液样本中CAR-T细胞随时间推移的数量和表型来评估药代动力学(或细胞动力学)。

图5. CAR-T 细胞流式检测(验证材料:外周血、骨髓、脑脊液)


表1. T细胞分化检测


  • MRD,即微小残留病灶,是指癌症治疗后残留在体内的少量癌细胞(对治疗无反应或耐药的癌细胞)。临床可使用MRD来衡量治疗的有效性,并预测哪些患者有复发的风险;可帮助医生动态监测和确认疾病的缓解情况,早期发现复发迹象,并尽早开始治疗;可告诉医生初始治疗效果如何,如果标准治疗方案效果不佳,医生会更改治疗方案,以更有效地获得疾病缓解。

表2. MRD流式检测

结果解读:

阳性——癌症治疗后仍可检测到残留(剩余)病灶(发现癌细胞,癌症治疗后残留的癌细胞会变得活跃并开始繁殖,导致疾病复发);

阴性——癌症治疗后未检测到残留(剩余)病灶(未发现癌细胞,对血癌患者来说是好事,研究表明MRD阴性与某些血癌更长的缓解期和更长的生存率有关)。


蛋白中心

  • 通常根据生物标志物的使用目的,Fit For Purpose Qualification分为三个级别:

表3. PD检测-分析方法验证参数


  • 细胞因子&特定蛋白检测

细胞因子释放综合征(CRS)是临床上最常观察到的细胞/基因治疗毒性,因此检测细胞因子的变化对于CGT的疗效和毒性等有重要的指导意义;
检测CGT治疗后体内分泌的特定蛋白、多肽或其它活性成分,也是药效学分析中不可或缺的一部分 。

表4. 细胞因子&特定蛋白检测-样本要求

细胞治疗过程中不同时间点病人血清中细胞因子含量变化,在CAR-T细胞输注后2-5d出现明显的细胞因子含量升高,此时应加强病人的监控,在30d的时候一般都会恢复到正常水平。

图6. Biomarkers for early prediction of grade ≥4 CRS[15]

*A-H:在指定时间点从患者获得的血清中列出的细胞因子浓度。

图7. 临床I期药效学数据展示——sBCMA变化

核酸中心

  • 据FDA指导文件,目前已上市CAR-T评审主要关注点包括:

(1)插入位点多克隆性;

(2)插入偏好是否与文献中描述的野生型HIV一致;

(3)重点关注是否在已知临床试验不良事件相关基因附近有插入位点(如 CCND2, LMO2, MECOM, MN1等);

(4)是否会偏好性插入在特定的抑癌致癌基因附近。

Type1:病人在首次 TCR-Cell扩增和二次扩增中表现出偏好性克隆扩增现象;但并未出现克隆持续扩增情况,表现出较好的药物作用持续性。

表5. 研究案例整合事件克隆增值情况特征分类一:良性偏好性克隆增殖

Type2:TOP克隆整合事件持续存在;无新克隆增殖现象出现。

表6. 研究案例整合事件克隆增值情况特征分类二:无克隆增殖偏好性

肿瘤患者接受过治愈性治疗(手术、放化疗等)后仍有残留的恶性细胞存在。MRD是早中期肿瘤患者术后复发和转移的重要原因,传统影像学或实验方法无法发现,但是可以通过液体活检监测MRD分子是否异常。使用NGS法进行MRD检测,可实现肿瘤全病程监控,具有重要临床意义。

图8. NGS MRD检测案例展示

迈杰医学已积累了丰富的CGT 临床项目检测服务经验,包括IIT试验,临床前期及I期临床项目40+项。公司可凭借转化医学全平台为细胞与基因治疗赋能,提供生物标志物的发现和验证、新药临床试验病人的分子检测和入组筛选、检测方法开发及伴随诊断试剂盒商业化等一体化解决方案,真正实现精准医疗!

表7. 迈杰医学细胞治疗临床检测解决方案


References

[1]  Rafiq S, Hackett CS, Brentjens RJ. Engineering strategies to overcome the current roadblocks in CAR-T cell therapy. Nat Rev Clin Oncol. 2020 Mar;17(3):147-167.

[2]  Considerations for the Development of Chimeric Antigen Receptor (CAR) T Cell Products; Draft Guidance for Industry, March 2022,  https://www.fda.gov/media/156896/download .

[3]  Schubert ML, Schmitt M, Wang L, Ramos CA, Jordan K, Müller-Tidow C, Dreger P. Side-effect management of chimeric antigen receptor (CAR) T-cell therapy. Ann Oncol. 2021 Jan;32(1):34-48.

[4]  Bonifant, C.L.; Jackson, H.J.; Brentjens, R.J.; Curran, K.J. Toxicity and management in CAR T-cell therapy. Mol. Oncolytics 2016,3, 16011.

[5]  Brentjens, R.J.; Riviere, I.; Park, J.H.; Davila, M.L.; Wang, X.; Stefanski, J.; Taylor, C.; Yeh, R.; Bartido, S.; Borquez-Ojeda, O.; et al. Safety and persistence of adoptively transferred autologous CD19-targeted T cells in patients with relapsed or chemotherapy refractory B-cell leukemias. Blood 2011, 118, 4817–4828.

[6]  Titov A, Petukhov A, Staliarova A, et al. The biological basis and clinical symptoms of CAR-T therapy-associated toxicities. Cell Death Dis. 2018;9:897.

[7]  Sachdeva M, Duchateau P, Depil S, et al. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor inactivation in CAR T-cells prevents monocyte-dependent release of key cytokine release syndrome mediators. J Biol Chem. 2019;294:5430-5437.

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